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        1. BiotSep Streptavidin 6FF Chromatography Column,1ML 生物素分子純化預裝柱,1ML

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          產(chǎn)品說明書

          FAQ

          COA

          已發(fā)表文獻

          產(chǎn)品描述

          Streptavidin Agarose Resin 6FF是一種生物素或生物素化的蛋白、抗體等物質的純化樹脂,其作用原理是基于鏈霉親和素與生物之間的相互作用,將鏈霉親和素高度交聯(lián)于6%瓊脂糖上,獨特的制備工藝使其具有更高的物理化學特性,可以耐受更高的壓力,在相對較高的流速下,實現(xiàn)對目的蛋白的純化,更適于工業(yè)大規(guī)模蛋白的純化。

          由于鏈霉親和素與生物之間的親和力很強,純化時需要在變性條件下洗脫;而鏈霉親和素對亞氨基生物素的親和力相對較弱,可以在 pH 9.5-11.0 結合,pH 4.0 時洗脫,不需要使用變性劑,所以能更好的保持親和素偶聯(lián)物的活性。

          BiotSep Streptavidin 6FF Chromatography Column, 1ML是裝填了Streptavidin Agarose Resin 6FF的一種中壓預裝柱,規(guī)格1 mL,預裝柱具有標準接口,可以適配商品化的各類中壓色譜系統(tǒng),如ÄKTA 等,方便客戶操作。


          產(chǎn)品性質

          基質(Matrix)

          高度交聯(lián)的6%瓊脂糖微球

          配體(Ligand)

          鏈霉親和素

          粒徑(Bead size)

          45-165   µm

          載量(Capacity)

          >200   nmol Biotin/mL介質

          最大壓力(PressureMax)

          0.3   MPa,3 bar

          pH穩(wěn)定范圍(pH range)

          2-10

          儲存緩沖液(Buffer)

          20%乙醇


          運輸和保存方法

          冰袋運輸。4℃保存,有效期2年。

          需準備試劑

          所用水和Buffer在使用前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾除菌。

          生物素或生物素化物質的純化

          結合/洗雜緩沖液:150 mM NaCl,20 mM NaH2PO4,pH 7.4

          洗脫緩沖液:8 M鹽酸胍,pH 1.5

          亞氨基生物素標簽物質的純化

          結合/洗雜緩沖液:50 mM碳酸銨,0.5 M NaCl,pH 10.0

          洗脫緩沖液:50 mM碳酸銨,0.5 M NaCl,pH 4.0


          使用方法

          注:樣品在上樣前最好用0.22 µm或0.45 µm濾膜過濾,減少雜質以防阻塞柱子。另外,確保樣品溶液有合適的離子強度和pH值,可以用結合/洗滌緩沖液對血清樣品、腹水或細胞培養(yǎng)液稀釋,或者樣品用結合/洗滌緩沖液透析。

          1樣品純化(以ÄKTA為例)
          1)準備:將泵管道中注滿去離子水。去掉上塞子,將層析柱連接至色譜系統(tǒng)中。再折斷下口,將預裝柱接到色譜系統(tǒng)中,并旋緊。

          2)清洗:3-5倍柱體積去離子水沖洗層析柱中儲存液。

          3)平衡:用5倍柱體積的結合Buffer平衡層析柱,使填料處于與目的蛋白相同的緩沖體系下,起到保護蛋白的作用。
          4)上樣:將樣品加到平衡好的層析柱中,推薦流速1 mL/min,保證目的蛋白與樹脂充分接觸,提高目的蛋白的回收率,收集流出液,待檢測。
          注:樣品的粘度增加使得即使上樣體積很少,也會導致層析柱很大的反壓。上樣量不要超過柱子的結合能力。大量的樣品體積也可能造成很大的反壓,使得進樣器更難使用。
          5)洗雜:用10-15倍柱體積的洗雜Buffer進行清洗,直到紫外吸收達到一個穩(wěn)定的基線,去除非特異性吸附的雜蛋白,收集洗雜液,待檢測。
          6)洗脫:用洗脫Buffer 采用一步法或線性梯度洗脫。一步洗脫中,通常5倍柱體積洗脫液足夠將目的蛋白洗脫下來。也可以用一個小的梯度,例如20倍柱體積或更多,來分離不同結合強度的蛋白質。
          7)清洗及保存:依次使用3倍柱體積的結合Buffer和5倍柱體積的去離子水平衡填料,最后再用5倍柱體積的20%的乙醇平衡,然后保存在等體積的20%的乙醇中,置于4度保存,防止填料被細菌污染。

          2 SDS-PAGE檢測

          將純化過程中得到的樣品(包括原始樣品、流出組分、洗雜及洗脫組分等)利用SDS-PAGE進行檢測,判定其純化效果。

          【注】由于鹽酸胍的帶電性強,會中和SDS的電荷,影響后面蛋白在上樣緩沖液里的帶電性能,電泳時產(chǎn)生沉淀,導致無法電泳。因此后續(xù)可以對樣本進行透析或者鹽析(透析可利用透析袋,PBS作為透析液,透析兩次,每次1小時,透析液的體積可控制在樣本的100倍)。

          3 填料清洗

          隨著非特異結合蛋白的增多和蛋白的聚集,會造成流速和結合載量性能下降,此時需對填料進行清洗。

          1)去除一些沉淀或變形物質

          用2倍柱體積的0.1 M NaOH或6 M鹽酸胍或8 M尿素溶液進行清洗,然后立即用5倍柱體積的PBS,pH 7.4清洗。

          2)去除一些疏水性吸附造成的非特異性吸附物質

          用3-4倍柱體積的70%乙醇或2倍柱體積1% Triton X-100清洗,然后立即用5倍柱體積的PBS,pH 7.4清洗。


          注意事項

          1)請勿冷凍保存本產(chǎn)品。

          2)所有操作過程中,樣本需要在4℃或冰上操作。

          3)為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。

          4)本產(chǎn)品僅作科研用途!


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