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        1. UCF.ME? Nuclease 全能核酸酶---核酸污染消除的“終極武器”

           

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          翌圣生物研發(fā)團(tuán)隊利用一流的基因工程改造技術(shù),研制而成的核酸污染去除的終極武器”—全能核酸酶,既保證了產(chǎn)品的純度與酶活,又確保了產(chǎn)品的穩(wěn)定性,目標(biāo)客戶攘括工業(yè)端與科研端兩大科學(xué)研究鏈,可滿足廣大生物研究者的基本需求。
           

          翌圣核酸酶,嚴(yán)格把控,品質(zhì)優(yōu)先
           

          1、質(zhì)檢項目

          貨號

          表達(dá)宿主

          活性

          內(nèi)毒素

          濃度

          純度SDS-PAGE

          純度SEC-HPLC

          細(xì)菌檢測

          蛋白酶檢測

          翌圣20125(工業(yè))

          酵母菌

          翌圣20156(科研)

          大腸桿菌

           

               

           

          2、質(zhì)檢結(jié)果

           

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          核酸酶超強(qiáng)特性
           

          特性一:耐受性強(qiáng)

          能夠與多種細(xì)胞裂解液同時使用,如RIPA;與含有多種離子和非離子型去污劑、還原劑的蛋白提取試劑等兼容。

          試劑

          耐受劑量

          耐受程度

          鹽酸胍

          >100 mM

          完全抑制Benzonase活性

          EDTA

          1 mM

          部分抑制Benzonase活性

          5 mM

          活性喪失90%

          PMSF

          1 mM

          不會抑制Benzonase活性

          Triton® X-100

          濃度<0.4%

          保持70%的活性

          濃度<0.4%<1%

          活性急劇降低

          濃度>1%

          活性喪失70%

          SDS

          濃度在0.1%~1%

          活性急劇降低

          尿素

          >6 M

          活性急劇降低

           

          特性二:操作簡易,輕松使用

          1、推薦使用條件

          條件參數(shù)

          最佳條件

          有效條件

          Mg2+

          1-2 mM

          1-10 mM

          pH

          8-9

          6-10

          溫度

          37℃

          0-42℃

          DTT

          0-100 mM

          >0 mM

          巰基乙醇

          0-100 mM

          >0 mM

          單價陽離子

          0-20 mM

          0-150 mM

          磷酸根離子

          0-10 mM

          0-100 mM

          2、推薦使用量

          實驗類型

          蛋白電泳樣品

          藥物生產(chǎn)-1g

          疫苗、病毒生產(chǎn)-1L

          細(xì)胞培養(yǎng)-1L

          推薦產(chǎn)品

          Benzonase(科研級,20156)

          Benzonase(無內(nèi)毒素級,20125)

          最低要求

          125 U(0.5 µL)

          25 U/mL(1 µL)

          0.1 U/mL(0.4 µL)

          0.1 U/mL(0.4 µL)

          建議用量

          500 U(2 µL)

          250 U/mL(10 µL)

          25 U/mL(100 µL)

          5 U/mL(20 µL)

          孵育時間

          通常作用時間37℃在15~60 min;25℃在30~120 min;

          :以上僅僅是推薦,可根據(jù)實驗自主摸索最優(yōu)實驗條件。

           

          助陣四方,應(yīng)用甚廣
           

          應(yīng)用1,除去生物制品中的DNA/RNA

          全能核酸酶可用于疫苗、多糖、蛋白等工業(yè)生物制品中核酸的去除,使生物制品的最終核酸含量符合要求,同時提高生物制品功效。并且研究者提供了一種可獲得HIV測序文庫的方案HIV-SMART,其中全能核酸酶的運(yùn)用,可顯著提高HIV病毒測序覆蓋度,且不影響病毒核酸的回收率。

          圖片.png
           3 +)添加和(-)不添加全能核酸酶處理的CHU1756NGS覆蓋圖[1]

          應(yīng)用2,用于降低細(xì)胞破碎后的粘度

          全能核酸酶可以降解所有形式的核酸,降低細(xì)胞裂解液的粘度,提高蛋白得率,改善分離效果,使之易于過濾(尤其是超濾),利于下游層析純化操作。

          圖片.png
          4 細(xì)胞裂解液Benonase處理(A)和未處理(B)比較圖

          應(yīng)用3,生化分析樣品的制備

          ELISA、色譜分析、雙相電泳和足跡分析等過程中,用全能核酸酶處理含有核酸的蛋白樣品,可提高分辨率,并提高回收率。

          圖片.png 

          5  小鼠腦核蛋白Benonase處理(A)和未處理(B)雙向電泳比較圖[2]

          應(yīng)用4,CAR-T治療相關(guān)行業(yè)(慢病毒包裝)

          圖片.png

           

          FAQ——如何擺脫后續(xù)核酸酶干擾?
           

          措施1采用EDTA螯合金屬離子會可逆地抑制全能核酸酶活性,極端條件會造成不可逆失活,例如100 mM NaOH,70℃處理30 min等;

          措施2:對于帶某種標(biāo)簽的Benzonase核酸酶可通過相應(yīng)的標(biāo)簽蛋白純化樹脂直接去除,去除率>95%;

          措施3:對于不帶標(biāo)簽的Benzonase核酸酶,可通過色譜純化去除核酸酶,然后可通過檢測殘留活性或ELISA檢測來判斷去除是否成功。


          產(chǎn)品訂購信息
           

          產(chǎn)品名稱

          貨號

          規(guī)格

          價格(元)

           

          UCF.ME Nuclease 全能核酸酶

          20156ES25

          25 KU

          418

          20156ES50

          50 KU

          768

          20156ES60

          100 KU

          1398

           

          UCF.ME Nuclease Ultrapure(Endotoxin-free)
           

          20125ES25

          25 KU

          1125

          20125ES50

          50 KU

          1965

          20125ES60

          100 KU

          3245

           

          文獻(xiàn)引用
           

          [1] Berg M G, Yamaguchi J, Alessandri-Gradt E, et al. A pan-HIV strategy for complete genome sequencing[J]. Journal of clinical microbiology, 2016, 54(4): 868-882.

          [2] Jankowska U, Latosinska A, Skupien-Rabian B, et al. Optimized procedure of extraction, purification and proteomic analysis of nuclear proteins from mouse brain[J]. Journal of neuroscience methods, 2016, 261: 1-9.

           

          HB200507

          400-6111-883